Infecția cu Toxoplasma gondii la oile...
3
0

Share on facebook
Facebook
Share on whatsapp
WhatsApp
Copiați link-ul

Infecția cu Toxoplasma gondii la oile din România

icon.png
Share on facebook
Share on whatsapp
Share on pinterest

Abstract

fundal

Toxoplasmoza este o zoonoză larg răspândită cauzată de parazitul protozoar intracelular Toxoplasma gondii. Sunt disponibile informații epidemiologice limitate despre prevalența T. gondii la ovine din România, iar o incidență mare ar avea implicații atât pentru economie, cât și pentru sănătatea publică. Din cunoștințele noastre, nu sunt disponibile studii despre T. gondii tulpini care circulă la miei. Obiectivul acestui studiu a fost de a evalua prevalența T. gondii la ovine (serologie), miei (serologie, biotest, PCR) și avorturi de oaie (PCR) din România. Mai mult, studiul și-a propus să realizeze caracterizarea genetică a T. gondii izolate din miei.

Metode

Probele de ser colectate de la 2650 de oi (2067 adulți și 583 miei) au fost testate pentru anti-T. gondii anticorpi (IgG) folosind un kit ELISA comercial. De asemenea, s-au recoltat 328 de perechi de probe mușchi-ser diafragmatice de la miei cu vârsta cuprinsă între 2 și 4 luni. Probele de ser de miel au fost analizate folosind MAT pentru anti-T. gondii detectarea anticorpilor. Probele de țesut de diafragmă de la miei pozitivi pentru MAT (la o diluție ≥ 1:25) au fost biotestate la șoareci. The T. gondii tulpinile au fost genotipizate folosind 15 markeri de microsateliți. În plus, au fost analizate probe de creier și inimă de la 76 de avorturi de oi T. gondii ADN prin reacția în lanț a polimerazei (PCR) care vizează regiunea repetă de 529 bp (REP529).

Rezultate

Rezultatele au arătat că mai mult de jumătate dintre oile testate au fost T. gondii seropozitiv (53,5%). Seroprevalența a fost semnificativ mai mare la adulți (61,1%) decât la miei (26,4%). Seroprevalența T. gondii infecția la mieii sacrificați, prin MAT, a fost de 37,5% (123/328). Au fost biotestate la șoareci 56 de țesuturi diafragmatice de la 123 de miei seropozitivi. Toxoplasma gondii tulpinile au fost izolate de la 18 (32,1%) miei destinati consumului uman. Toate T. gondii tulpinile au fost confirmate prin PCR. Șase tulpini au fost genotipizate folosind 15 markeri de microsateliți și au aparținut genotipului II. Toxoplasma gondii ADN-ul a fost detectat în 11,8% (9/76) dintre avorturile de oi.

Concluzii

Studiul de față a arătat prezența T. gondii la ovine în toate regiunile luate în considerare în studiu. Prevalența ridicată a T. gondii infecția la oi și miei, demonstrată prin serologie, analize moleculare și biotest, a evidențiat faptul că există un risc important de infecție umană în consumul de carne crudă sau insuficient de gătită de oaie/miel.

Abstract grafic

fundal

Toxoplasma gondii, Phylum Apicomplexa, este un parazit zoonotic cu răspândire mondială. Parazitul are un ciclu de viață heteroxen cu Felidae ca gazdă definitivă (stadiile asexuate și sexuale în epiteliul intestinal) și animalele cu sânge cald, inclusiv oamenii, ca gazde intermediare (stadiul extraintestinal asexuat, în principal în creier și mușchi) [1]. Stadiile infecțioase sunt reprezentate de sporozoiții din oochisturile sporulate, bradizoiții din chisturile tisulare și tahizoiții.2]. Infecțiile umane pot fi dobândite prin ingestia de oochisturi sporulate din apă sau legume și chisturi tisulare din carne crudă sau insuficient gătită. De asemenea, transmiterea congenitală a tahizoiților reprezintă o cale importantă de infecție pentru făt.

Toxoplasmoza la oi a fost descrisă pentru prima dată de Hartley et al. [3]și Hartley și Marshall [4]. Deși pisicile și felidele sălbatice sunt considerate sursa predominantă de infecție la oi datorită contaminării continue a pășunilor cu T. gondii oochisturi, transmiterea congenitală nu trebuie uitată [5]. În general, majoritatea oilor devin T. gondii seropozitive după naștere, 6]. După infectarea cu T. gondiioile dezvoltă răspunsuri imune umorale și mediate celular împotriva parazitului, ceea ce oferă protecție eficientă împotriva parazitului în timpul sarcinilor ulterioare.6]. In orice caz, T. gondii este o cauză majoră a avortului și a nașterii mortii la ovine din întreaga lume, provocând pierderi economice semnificative crescătorilor din cauza infertilității, tulburărilor de reproducere, pierderii puilor și reducerii producției de lapte.7, 8].

În plus, infectarea oilor cu T. gondii poate avea implicații importante pentru sănătatea publică. În țările cu climă temperată, între 30 și 63% din T. gondii infecțiile la oameni au fost atribuite consumului de carne crudă sau insuficient gătită și/sau produse din carne [9]. Carnea de oaie este recunoscută la nivel mondial ca o sursă majoră de toxoplasmoză [10]. S-a demonstrat o corelație pozitivă între consumul de carne de oaie și prevalența toxoplasmozei la om.11]. Ingestia de carne cruda sau insuficient prelucrata termic contaminata cu T. gondii poate facilita transmiterea zoonotică a parazitului, care poate fi prezent în aproape toate țesuturile comestibile de oaie.12]. Un studiu recent a arătat o distribuție inegală a T. gondii chisturi în mostrele de mușchi de la miei și a indicat că chiar și cantități mici de carne (5-10 g) pot avea potențialul de a transmite T. gondii [13].

Pe lângă transmiterea congenitală, T. gondii poate provoca simptome clinice severe la persoanele cu un sistem imunitar deficitar, cum ar fi pacienții cu HIV/SIDA, pacienții cu oncologie sau primitorii de transplant. Pentru acești indivizi imunocompromiși, studii recente au demonstrat un risc crescut de dobândire T. gondii infecție [14].

În România, creșterea oilor a fost una dintre cele mai vechi ocupații, iar fenomenul care definește istoria păstoritului este transhumanța. Țară cu o mare tradiție și experiență în creșterea oilor, în 2020 România s-a clasat pe locul trei în Uniunea Europeană, după Spania și Grecia, în ceea ce privește efectivele de rumegătoare mici, cu 11.189 milioane de capete.15]. Oile sunt crescute în principal pentru producția de lapte și carne. Carnea de miel se consuma mai ales in perioada sarbatorilor pascale.

Seroprevalența anti-T. gondii anticorpii la oameni în nord-vestul și centrul României a fost de 59,5%, mai mare în mediul rural (63,6%) decât în ​​mediul urban (55,1%).16]. Riscul anual de infecție este estimat la 3–4,5% pentru copii/adolescențe, 1–2% pentru adulți și 5,5% pentru persoanele cu vârsta de până la 65 de ani.16].

Având în vedere situația epidemiologică a T. gondii la om din țara noastră, importanța economică a toxoplasmozei ovine, precum și cantitatea limitată de date privind toxoplasmoza la ovine din țara noastră, scopul acestui studiu a fost estimarea prevalenței T. gondii infecție la oi și miei din România. Studiul a fost împărțit în patru substudii: (1) studiu seroepidemiologic; (2) studiu biotest; (3) studiază asupra T. gondii prevalența la fetușii avortați; (4) diversitatea genetică a tulpinilor izolate de la miei.

Metode

Studiu seroepidemiologic

Un total de 2650 de probe de sânge au fost colectate prin puncția venei jugulare sau în timpul sacrificării oilor adulte selectate aleatoriu (n=2067; vârsta=1–6 ani) și miei (n = 583; age = 2–8 months old). The sheep originated in 16 counties from four regions of Romania: central (Alba, Mureș, Brașov, Harghita, Covasna), northwestern (Bihor, Cluj, Sălaj, Satu-Mare, Maramureș, Bistrița-Năsăud), western (Arad, Timiș, Caraș-Severin, Hunedoara) and southeast (Buzău) (Fig.1). Oile au fost crescute în turme cu 50–1000 de animale pe unitate. Turmele de oi aveau voie să pască din primăvară până în toamnă, iar apele de izvor reprezentau sursa principală de apă. Probele au fost recoltate cu acordul crescătorilor de oi sau al medicului veterinar din abator. Crescătorii de oi au participat voluntar la studiu. Au fost colectate date privind vârsta, județul și regiune (Tabel 1Smochin.1). Probele au fost refrigerate și transportate în aceeași zi la laborator. Probele de sânge au fost centrifugate la 3000 rpm timp de 10 minute, iar serurile au fost păstrate la -20 °C până la analize ulterioare.

Fig. 1

Distribuția regională a oilor incluse în studiu în județele și regiunile din România. Pătratele indică județele de proveniență a oilor pentru studiu serologic; cercurile indică judeţele de provenienţă a mieilor pt T. gondii studiu de izolare; triunghiurile indică județele de origine a avorturilor de oi. Numărul total de oi pe regiune pentru studiul serologic este indicat de ovale negre. Numărul total de miei pe regiune pt T. gondii studiul de izolare este indicat de ovalele gri. Numărul total de avorturi de oi pe regiune este indicat de ovalele albe

Imagine la dimensiune completă

Tabelul 1 Seroprevalența T. gondiiinfecție la oile și mieii adulți din România prin ELISA

Tabel de dimensiuni complete

Toxoplasma gondiianticorpii IgG specifici au fost detectați prin test imunosorbent legat de enzime (ELISA) folosind un kit comercial (Chekit Toxotest Antibody ELISA, Idexx-Bommeli, Elveția) urmând instrucțiunile producătorilor. Rezultatele testului au fost interpretate ca pozitive, îndoielnice sau negative.

Studiu de biotestare

În timpul sacrificării, s-au recoltat aleatoriu probe perechi de mușchi diafragmatic (5–25 g) și sânge de la 328 de miei din șapte județe din patru regiuni ale României: central (Mureș, Harghita, Covasna), nord-vest (Cluj, Maramureș), vest (Arad). ) și sud-est (Buzău) (Fig.1). Mieii aveau 2–4 luni și cântăreau 8–25 kg. Au fost sacrificate în timpul sărbătorii de Paște și destinate consumului familial. A fost pregătit un chestionar pentru colectarea datelor privind vârsta și regiunea de origine a animalelor (Tabel 3). Probele au fost transportate în condiții frigorifice la laborator. Probele de ser au fost testate prin testul de aglutinare modificat (MAT) în 24-48 de ore. Probele de țesut diafragmatic au fost păstrate în condiții de refrigerare (4 °C) până când a fost efectuată biotestul la șoareci.

MAT pentru detectarea T. gondii anticorpii IgG specifici au fost efectuate așa cum s-a descris anterior [17]folosind un antigen preparat din tahizoiți întregi de tulpină RH fixată cu formol (Reims, Franța). Fiecare probă de ser a fost diluată în serie de două ori. Diluția prag a fost 1:6, iar diluțiile au continuat până la sfârșitul seropozitivității. Toate probele de ser cu un titru ≥ 1:6 au fost considerate pozitive.

Probele de țesut de diafragmă de la miei identificați ca seropozitivi de către MAT la o diluție ≥ 1:25 au fost biotestate pe șoareci elvețieni lipsiți de patogeni. Protocolul descris în studiul lui Paştiu et al. [18]a fost folosit. Pe scurt, fiecare probă de diafragmă a fost tocată și amestecată (Knife Mill Grindomix GM 200, Retsch, Haan, Germania) cu soluție de digestie (0,25% tripsină (93.613, Sigma-Aldrich, Saint Louis, MO, SUA)/0,025% EDTA). Omogenatul a fost incubat la 37 °C timp de 1,5 ore și apoi filtrat prin tifon. Suspensia a fost centrifugată la 1800xg timp de 10 minute, supernatantul a fost aruncat, iar peletul (digeratul) a fost spălat cu PBS, pH 7,2 (soluţie salină tamponată cu fosfat), prin centrifugare de trei ori. Digeratul a fost amestecat cu 3 ml PBS conţinând 100 μl soluţie de antibiotic (20.000 unităţi penicilină/10.000 unităţi streptomicina, P0781, Sigma-Aldrich) [19]. Pentru fiecare probă, 0,5 ml de digerat au fost inoculați intraperitoneal la doi șoareci elvețieni. De două ori pe zi, șoarecii au fost monitorizați. După 4 săptămâni, toți șoarecii supraviețuitori au fost uciși și sângerați, iar serurile au fost testate de MAT pentru anti-T. gondii Detectarea anticorpilor specifici IgG. După moartea șoarecilor, creierul lor a fost recuperat. Dacă s-au observat timp de 3 zile consecutiv semne de toxoplasmoză acută (blană ciufulită, răspuns diminuat la manipulare, stare de prostrație, scădere severă în greutate și semne neurologice); șoarecii fuseseră uciși mai devreme. Creierele de șoarece au fost omogenizate mecanic și examinate la microscop pentru căutarea și numărarea chisturilor cerebrale. Pentru fiecare creier, au fost pregătite cinci lame de sticlă. De asemenea, creierele de șoarece au fost analizate prin PCR convențională (cPCR) care vizează elementul repetat de 529 bp (RE) [20]. Tulpinile izolate ale T. gondiiau fost ulterior genotipizate.

Prevalența Toxoplasmei gondii la fetușii avortați

Un total de 76 de fetuși de oaie avortați (n=67) și miei născuți morți (n=9) au fost colectate și analizate pentru prezența T. gondii . Fetuși avortați, originari din două județe din centrul României (Alba, Sibiu) și două județe din nord-vestul României (Cluj, Bistrița-Năsăud) (Fig.1), au fost aduse de crescătorii de ovine pentru investigații la Facultatea de Medicină Veterinară, Cluj-Napoca. Fetușii avortați au fost expulzați în diferite perioade de gestație. Mostre de inimă (n=76) și creier (n=73) au fost colectate de la fiecare făt avortat. Probele au fost păstrate la – 20 °C până la procesarea prin cPCR [20].

Reacția în lanț a polimerazei (PCR)

ADN-ul a fost extras din creierul de șoarece și țesuturile fetale avortate (inima și creierul) folosind un kit comercial (Izolate Genomic II DNA Kit, Meridian Bioscience, SUA) conform protocolului producătorului. Martorii pozitivi și negativi au fost reprezentați de ADN obținut din T. gondiiTulpina RH și respectiv țesut de la șoareci elvețieni patogeni liberi. Toxoplasma gondii ADN-ul a fost amplificat prin PCR convențională folosind primerii de pereche Tox 4 (5′ CGC TGC AGG GAG GAA GAC GAA AGT TG 3′) și Tox 5 (5′ CGC TGC AGA CAC AGT GCA TCT GGA TT 3′) care amplifică 529- bp RE (REP529, nr. de acces GenBank AF146527) așa cum a fost descris anterior [20]. În fiecare cursă au fost incluse martori pozitivi și negativi și apă ultrapură distilată.

Analiza genotipului

Probe de ADN extrase din chisturi cerebrale la șoareci pozitive pentru T. gondii ADN-ul a fost supus genotipării folosind 15 markeri de microsateliți (N61, B18, M33, M48, TUB2, N83, XI.1, N82, TgM-A, W35, IV.1, B17, N60, M102, AA). Pe scurt, pentru fiecare pereche de primeri, primerul direct a fost marcat la capătul 5′ cu fluoresceină pentru a permite dimensionarea produselor PCR supuse electroforezei într-un secvențietor automat: 6-carboxifluoresceină (6-FAM) a fost utilizată pentru TUB2, XI.1, B18, N83, N61, M33 și M48; hexaclorofluoresceină (HEX) pentru MS TgM-A, B17, N82, W35 și IV.1; și 2,7′,8′-benzo-5′-fluor-2′,4,7-tricloro-5-carboxifluoresceină (NED) pentru AA, N60 și M102. PCR a fost efectuată într-un amestec de reacție de 25 pl constând din 12,5 pl 2x QIAGEN Multiplex PCR Master Mix (Qiagen, Courtaboeuf, Franța), 5 pmol din fiecare primer și 5 pl ADN. După o denaturare inițială de 15 minute la 95 °C, s-au efectuat 35 de cicluri după cum urmează: 30 s la 94 °C, 3 minute la 61 °C, 30 s la 72 °C. Aceasta a fost urmată de o prelungire finală timp de 30 de minute la 60 °C. Produsele PCR au fost diluate 1:10 cu formamidă deionizată. Un microlitru din fiecare produs PCR diluat a fost amestecat cu 0,5 ui dintr-un standard de dimensiune marcat cu colorant (ROX 500, Applied Biosystems, Life Technologies, Carlsbad, CA) și 23,5 ui formamidă deionizată (Applied Biosystems). Acest amestec a fost denaturat la 95 °C timp de 5 minute și apoi electroforezat folosind un secvențietor automat (ABI PRISM 3130xl, Applied Biosystems). Dimensiunile alelelor în bp au fost estimate folosind software-ul de analiză GeneMapper (versiunea 5.0, Applied Biosystems).

Datele microsateliților au fost folosite pentru a produce un arbore de unire a vecinilor nerădăcinat folosind Populations 1.2.32 (http://bioinformatics.org/populations/) bazat pe Cavalli-Sforza și Edwards [21]estimator de distanță de acorduri și generat cu MEGA7 (http://www.megasoftware.net/history.php).

analize statistice

Estimări punctuale și intervale de încredere de 95% (IC 95%) pentru anti-T. gondii anticorpi și T. gondii ADN-ul a fost calculat. Acești parametri au fost determinați în ansamblu și pe grupe de vârstă (miei P -valoarea http://wwwn.cdc.gov/epiinfo).

Rezultate

Studiu seroepidemiologic

Seroprevalența globală a T. gondii anticorpii la ovine prin ELISA a fost de 53,5% (1417/2650; 95% CI: 51,57–55,36%). În plus, 4,6% (121/2650; 95% CI: 3,8–5,4%) dintre seruri au obținut rezultate îndoielnice (Tabel 1).

Seroprevalența a fost semnificativ mai mare la oile adulte (61,10%; 1263/2067; 95% CI: 58,98–63,18; P h2=219,97, df=1) decât la miei (26,42%; 154/583; 95% CI: 22,9–30,14). Rezultate îndoielnice au fost obținute la 3,77% (IC 95%: 3,03–4,68) dintre adulți și 7,38% (IC 95%: 5,52–9,79) dintre miei. Cea mai mare seroprevalență la oile adulte a fost observată în vestul României (74,94%; 296/395; 95% CI: 70,44–78,96; P P 1).

La miei, cea mai mare seroprevalență a anti-T. gondii anticorpii au fost obținuți la grupa de vârstă de 4 luni (61/132; 46,2%; 95% CI: 37,5–55,1; P h2=276,567, df=9), în timp ce în categoria de 2 luni niciun eșantion nu a fost pozitiv (0/40; 95% CI: 0,0–8,8%) (Tabel 2).

masa 2 Toxoplasma gondii seroprevalența la miei în funcție de vârstă prin ELISA

Tabel de dimensiuni complete

Studiu de biotestare

Seroprevalența T. gondii la mieii prelevați pentru biotestul prin MAT a fost de 37,5% (123/328; CI 95% 32,3–43,0) (Tabel 3), cu titruri de anticorpi cuprinse între 1:6 și 1:12.800 (Fig.2). Titrurile obţinute la diluţii în serie în probe pozitive au fost: 1:6 în 35 de probe; 1:10 în 32 de mostre; 1:25 în 17 mostre; 1:50 în 7 mostre; 1:100 în 14 mostre; 1:200 în 8 mostre; 1:400 în 2 mostre; 1:3200 în 2 mostre; 1:6400 într-o probă; 1:12.800 în 5 mostre, respectiv (Fig.2).

Tabelul 3 Seroprevalența T. gondii infecție la miei după MAT și numărul de T. gondii izolate

Tabel de dimensiuni complete

Fig. 2

Numărul de miei prin anti-Toxoplasma gondii Titrul de IgG în MAT și pozitiv în biotest

Imagine la dimensiune completă

Cincizeci și șase din 123 de seruri de miel seropozitive la MAT au avut rezultate pozitive cu un titru ≥ 1:25 (Fig.2). Fiecare dintre aceste animale a fost biotestat la șoareci și a fost viabil T. gondii a fost izolat de la 18 miei (32,14%). Izolatele obținute pe șoareci provin de la miei prelevați în centrul României: județul Harghita (n=2), jud. Covasna (n=2) și județul Mureș (n=2), în nord-vestul României: județul Cluj (n=6) și județul Maramureș (n=4) și în sud-estul României: județul Buzău (n=2) (Tabel 3). PCR-urile efectuate pe ADN extras din creierul de șoarece au confirmat rezultatele microscopice. Mieii pozitivi la biotest au avut titru MAT ≥ 1:200.

Unsprezece din 18 tulpini au fost supuse genotipării. Doar doi T. gondii tulpinile au fost genotipizate pe toți cei 15 markeri de microsateliți (TgRO-1LCj; TgRO-2LCj). Celelalte patru tulpini (TgRO-3LCj; TgRO-4LCj; TgRO-5LCj; TgRO-6LCj) au fost incomplete cu între 11 și 14 obținute în markeri microsateliți. Cantitatea de ADN pentru celelalte cinci tulpini a fost inadecvată pentru genotiparea microsateliților. Toxoplasma gondii izolatele au împărtășit același genotip de tip II, cu excepția markerilor lipsă pentru cele patru tulpini incomplete (Tabel 4Smochin.3).

Tabelul 4 Genotipurile de T. gondii izolate de la oi, porci, capre și oameni utilizate în studiul nostru

Tabel de dimensiuni complete

Fig. 3

Arborele de alăturare a vecinului de T. gondii tulpini din România, deduse din distanțele Cavalli-Sforza calculate pentru 15 markeri de microsateliți. Cercurile indică tulpinile românești (n=8) cu două cercuri negre corespunzătoare celor două tulpini ale acestui studiu prezentând un genotip complet; pătratele corespund tulpinilor de referință (tipul I cu roșu, tipul II cu verde și tipul III cu albastru)

Imagine la dimensiune completă

Toxoplasma gondii prevalenta la fetusii avortati

Toxoplasma gondii ADN-ul a fost detectat la nouă (11,84%; IC 95%: 5,56–21,29) din 76 de fetuși avortați/morți testați. Atât probele de creier, cât și de inimă colectate de la toți cei nouă fetuși avortați au fost pozitive la PCR care vizează regiunea repetă de 529 bp. Probele pozitive au aparținut fetușilor avortați expulzați în primele perioade de gestație și niciunul dintre fetuşi născuţi morţi prezentaseră T. gondii ADN.

Discuţie

Toxoplasma gondii este responsabilă de toxoplasmoză, o importantă boală parazitară zoonotică, cu potențial de consecințe grave nu numai la oameni, ci și la toate gazdele intermediare, cum ar fi oile.

Seroprevalența toxoplasmozei la ovine variază între studii, țări și zone geografice. Seroprevalența anti-T. gondii tipurile de anticorpi IgG la ovine din diferite țări europene este variabilă: 89% în Franța [22], 87,4% în Belgia [23], 74% în Marea Britanie [24], 46,5% în Spania [25], 28% în Italia [26], 27,8% în Țările de Jos [27]și 17,2% în Letonia [28]. Alți factori care pot duce la variații ale seroprevalenței T. gondii infecția pot fi testele serologice utilizate, numărul de animale testate, vârsta animalelor și sistemul de management [12, 29]. Prezența pisicilor, antecedentele de avorturi la ovine în ultimele 12 luni, rasa, mărimea fermei, sistemul de creștere semi-intensiv, suplimentarea cu săruri minerale și originea apei sunt considerate factori de risc pentru T. gondii infecție la oi [30, 31].

Rezultatele studiului de față au arătat că T. gondii infecția la ovine este larg răspândită în România (53,5%). Din cele 2650 de seruri testate, 4,6% au avut un rezultat îndoielnic la tehnica de imunotest ELISA. În general, după infectarea oilor cu T. gondii oochistele, anticorpii IgG ating nivelul maxim după 2 luni și persistă la titruri mari timp de câteva luni.1, 32], ceea ce poate explica unele dintre aceste cazuri îndoielnice. Reacția îndoielnică se poate datora și antigenelor comune la nivelul proteinelor de suprafață prezente la unii paraziți din filul Apicomplexa precum Neospora spp., Toxoplasma spp. și Hammondia spp. etc. [33].

Seropozitivitatea la oi a crescut în studiul nostru odată cu vârsta, oile adulte fiind expuse T. gondii oochisturi pentru o perioadă mai lungă decât mieii [34]. În România, studiile anterioare au raportat o seroprevalență de T. gondii anticorpi la miei și oi adulte prin ELISA, variind între 6,5 și 30,6% [35, 36]și, respectiv, 36,3–62,99% [36, 37]. Studiul nostru confirmă că vârsta este un factor de risc pentru T. gondii infecție, seroprevalența obținută la adulți (61,1%) fiind de peste două ori mai mare decât la miei (26,4%). Am investigat miei cu vârsta cuprinsă între 2 și 8 luni. Nici un miel de 2 luni nu a fost T. gondiiseropozitiv. Cea mai mare seroprevalență a anti-T. gondii anticorpii au fost obținuți în grupul de 4 luni (46,2%). Apoi, seroprevalența a scăzut la grupurile de 5 și 6 luni și a crescut în grupul de 8 luni. La rumegătoare, spre deosebire de primate, anticorpii IgG materni se transmit prin colostru și nu transplacentar și trec în sânge la 24-48 de ore după naștere.38]. Mai mult, anticorpii materni scad la vârsta de 3 luni și dispar până la vârsta de 5 luni.34]. Titrul ridicat de anticorpi și vârsta mieilor> 5 luni sugerează un răspuns imun cauzat de un activ T. gondii infecție și nu anticorpi dobândiți transcolostral [34].

În plus, a fost observată o diferență statistică semnificativă în seroprevalența obținută între diferitele regiuni ale studiului nostru. Diferențele dintre regiuni se datorează probabil varietății gradului de prezență a felinelor în funcție de zonă și, de asemenea, condițiilor climatice, care pot influența sporularea și rezistența acestora. T. gondii oochisturi. Oile incluse în studiu sunt pășunate din primăvară până în toamnă; prin urmare, pisicile și felidele sălbatice pot fi o sursă importantă de T. gondii contaminare. România are o climă temperată continentală, fiind semiaridă în sud-estul țării și mai umedă în regiunile din interiorul Arcului Carpatic. Aceasta poate explica seroprevalența mai scăzută în sud-estul României. În Serbia, Klun et al. [39]a constatat că regiunea și tipul fermei erau asociate cu T. gondii seroprevalenţa.

MAT (testul de aglutinare modificat) este o tehnică serologică utilizată pentru detectarea anti-T. gondii anticorpi la oaie [40, 41]. Avem izolat 18T. gondii tulpini de miei cu vârsta cuprinsă între 2,5 și 4 luni cu titruri MAT ≥ 1:200. Dubey et al. [40]și Dumètre și colab. [42]au obținut viabile T. gondii tulpini de la miei cu vârsta cuprinsă între 6 și 12 luni și oi cu titruri MAT ≥ 1:50. Prin urmare, 53T. gondii izolate de 68 de miocardii de miei (77,9%) și 8T. gondiiizolate din 30 de miocardie de oi (26,6%) au fost obținute în SUA, respectiv Franța [40, 42]. La fel, în Spania, din țesutul miocardic de oaie, 20 (40%) T. gondii izolatele au fost obținute din 50 de încercări de izolare [43]. Diferența dintre ratele de izolare a paraziților poate fi explicată prin vârsta animalelor testate (miei sau oi), țesutul folosit pentru biotest (țesut diafragmatic sau miocard), cantitatea de țesut folosită pentru biotest (5–25 g diafragmatic). țesut sau 50 g miocard) și numărul de șoareci utilizați pentru biotest (2, 5 sau 10) [40]. Mai mult, a fost observată o corelație semnificativă între titrul MAT și procentul de T. gondii izolate obținute. Dacă titrul MAT este> 1:16, probabilitatea de a obține izolate este de aproximativ 65%. Probabilitatea scade semnificativ atunci când titrul MAT este 41].

În studiul de față au putut fi izolate 18 tulpini. Șase dintre aceste 18 izolate ar putea fi genotipizate folosind markeri microsateliți, obținându-se două genotipuri complete (TgRO-1LCj; TgRO-2LCj), și alte patru incomplete cu între 11 și 14 markeri obținuți (TgRO-3LCj; TgRO-4LCj; TgRO-5LCj; TgRO-6LCj). Aceste șase genotipuri au fost identice pe toți markerii obținuți și au aparținut liniei de tip 2. Având în vedere că toate cele șase tulpini provin de la miei crescuți în același turmă din județul Cluj, este probabil aceeași clonă epidemică. Din câte știm, acesta este primul studiu din România care raportează izolarea și caracterizarea viabilului T. gondii de la miei seropozitivi crescuţi într-un sistem extensiv de creştere.

Caracterizarea genetică a T. gondii tulpină care circulă în Europa a arătat că tipul II este de departe cel mai frecvent întâlnit la animale, urmat de tipul III și tipul I [22, 43,44,45].

Tehnicile utilizate pentru diagnosticarea T. gondii la ovine avorturile pot fi serologice, histologice, moleculare si biologice. Toxoplasma gondii detectarea ADN-ului genomic în diferite țesuturi de avort de oaie este considerată utilă și demonstrează transmiterea congenitală a parazitului [46, 47]. Infecțiile congenitale apar numai atunci când oaia se infectează în timpul sarcinii. Pentru a asocia T. gondii cu tulburări de reproducere, este necesar să se identifice T. gondii -ca leziuni prin examen histologic si nu numai pentru depistarea ADN-ului de T. gondii [12]. Moartea embrionară, absorbția fătului, moartea fetală, mumificarea, avortul și nașterea mortii sunt consecințele dezvoltării leziunilor macroscopice ale placentei, cauzate de inflamația focală și necroza cotiledoanelor.48, 49]. Cu toate acestea, izolarea parazitului prin biotest la șoareci este „standardul de aur” în diagnosticul toxoplasmozei la avorturile de oaie[1].50, 51]. Biotestul la șoareci are, de asemenea, dezavantaje, cum ar fi aspecte etice și dificultăți logistice și de cost. Mai mult, implementarea lui în diagnosticul de rutină al bolilor congenitale la ovine este complicată.

Într-o meta-analiză recentă care a inclus studii globale asupra T. gondii infecție la avorturile de ovine, a fost raportată o prevalență de 42% prin PCR și 16% prin serologie [52]. Prezenta lui T. gondiiADN-ul la fetușii de oaie a fost raportat în diferite studii din Europa, cu prevalență variind între 5,4% în Spania (4/74) [53]și 53,7% în Marea Britanie [54]. În studiul de față, 9 (11,8%) din 76 de fetuși de oaie avortați testați au fost găsiți pozitivi prin PCR, ADN-ul fiind detectat atât în ​​probe de creier, cât și de inimă. În Spania, Fernández-Escobar și colab. [43]găsite T. gondii ADN-ul în 60,3% din țesuturile cerebrale fetale, țesutul placentar și creierul de la miei slabi morți, provenind din 22 de focare de avort. Cu toate acestea, prevalența ADN-ului parazit a fost diferită în funcție de tipul de țesut testat: 63,2% în creierul fetal, 69,0% în placentă și, respectiv, 11,1% în creierul mieilor slabi.43]. Chessa şi colab. [55]a raportat, de asemenea, o prevalență variabilă a T. gondii ADN, cu valori de 3,5% în placentă, 87% în creier și 66,6% în probe de ficat de la fetuși de oaie.

Concluzii

Toxoplasma gondii rămâne o provocare atât pentru medicina umană, cât și pentru cea veterinară. Toate cunoștințele legate de biologia paraziților, diversitatea sa genetică, factorii de risc, răspunsul imun și epidemiologie ar trebui utilizate pentru a reduce contaminarea mediului, precum și transmiterea parazitului. Studiul de față raportează o prevalență ridicată a T. gondii infecție la oi și miei din România și subliniază, prin urmare, că contaminarea umană prin consumul de carne de oaie/miel crudă sau insuficient gătită este un factor de risc important. Studiul subliniază, de asemenea, că rolul de T. gondii ca agent etiologic asociat cu avortul și nașterea mortii la oi nu trebuie uitat.

Disponibilitatea datelor și materialelor

Datele care susțin rezultatele și concluziile acestui articol sunt incluse în articol.

Abrevieri

CI:

Interval de încredere

ELISA:

Test legat de imuno absorbția enzimelor

6-FAM:

6-carboxifluoresceină

HEX:

Hexaclorofluoresceină

MAT:

Test de aglutinare modificat

NED:

2,7′,8′-Benzo-5′-fluor-2′,4,7-tricloro-5-carboxifluoresceină

PCR:

Reacția polimerazei în lanț

Referințe

  1. Dubey JP, Beattie CP. Toxoplasmoza animalelor și a omului. Boca Raton: CRC Press; 1988.

    Google Academic

  2. Dubey JP, Lindsay DS, Speer CA. Structuri ale Toxoplasma gondii tahizoiții, bradizoiții și sporozoiții și biologia și dezvoltarea chisturilor tisulare. Clin Microbiol Rev. 1998;11:267–99.

    Articol CAS Google Academic& nbsp;

  3. Hartley WJ, Jebsonand JL, McFarlane D. Noua Zeelandă tip II avort la oi. Aust Vet J. 1954;30:216–8.

    Articol Google Academic

  4. Hartley WJ, Marshall SC. Toxoplasmoza ca cauză a mortalității perinatale ovine. NZ Vet J. 1957;5:119–24.

    Articol Google Academic

  5. Dubey JP. Toxoplasmoza – o zoonoză transmisă prin apă. Vet Parasitol. 2004;126:57–72.

    Articol CAS Google Academic

  6. Dubey JP. Istoria descoperirii ciclului de viață al Toxoplasma gondii . Int J Parasitol. 2009;39:877–82.

    Articol CAS Google Academic

  7. Lindsay DS, Dubey JP. Neosporoza, toxoplasmoza și sarcocistoza la rumegătoare: o actualizare. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2020;36:205–22.

    Articol Google Academic

  8. Salehi M, Nezami H, Niazkar HR. Ancheta de Toxoplasma gondii infecție la fetușii avortați de oi folosind PCR: un studiu în provincia Khorasan de Nord, Iran. Vet Med Int. 2020;2020:7913912.

    Articol Google Academic

  9. Cook AJ, Gilbert RE, Buffolano W, Zufferey J, Petersen E, Jenum PA și colab. Surse de infecție cu toxoplasmă la femeile însărcinate: studiu european multicentric caz-control. Br Med J. 2000;321:142–7.

    Articol CAS Google Academic

  10. Dubey JP, Jones JL. Toxoplasma gondii infecție la oameni și animale în Statele Unite. Int J Parasitol. 2008;38:1257–78.

    Articol CAS Google Academic

  11. Ai K, Huang CQ, Guo JJ, Cong H, He SY, Zhou CX și colab. Detectarea moleculară a Toxoplasma gondii în sacrificarea oilor și caprelor din provincia Shandong, estul Chinei. Vector Borne Zoonotic Dis. 2020;20:193–6.

    Articol Google Academic

  12. Dubey JP, Murata FHA, Cerqueira-Cézar CK, Kwok OCH, Su C. Importanța economică și de sănătate publică a Toxoplasma gondii infecții la ovine: 2009–2020. Vet Parasitol. 2020;286:109195.

    Articol CAS Google Academic

  13. Rani S, Cerqueira-Cézar CK, Murata FHA, Kwok OCH, Dubey JP, Pradhan AKJ. Distribuția de Toxoplasma gondii chisturi tisulare în mușchii umerilor la capre și miei infectați natural. Alimente Prot. 2020;83:1396–401.

    Articol CAS Google Academic

  14. Wang ZD, Liu HH, Ma ZX, Ma HY, Li ZY, Yang ZB și colab. Toxoplasma gondiiinfecție la pacienții imunocompromiși: o revizuire sistematică și meta-analiză. Microbiol frontal. 2017;8:389.

    Google Academic

  15. Recensământul General Agricol din România. Institutul Național de Statistică, Comunicat de presă Nr. 122/2022. 2021. (disponibil la: https://insse.ro/cms/sites/default/files/com_presa/com_pdf/ef.animale_r2021.pdf).

  16. Coroiu Z, Radu R, Molnar A, Bele J. Seroprevalence of anti-Toxoplasma gondii anticorpi în populația sănătoasă din nord-estul și centrul României. Rev Sci Parasitol. 2009;10:37–42.

    Google Academic

  17. Dubey JP, Desmonts G. Răspunsuri serologice ale ecvideelor ​​hrănite Toxoplasma gondii oochisturi. Equine Vet J. 1987;19:337–9.

    Articol CAS Google Academic

  18. Paştiu AI, Cozma-Petruț A, Mercier A, Balea A, Galal L, Mircean V, et al. Prevalence and genetic characterization of Toxoplasma gondii la porcii din curte infectați natural, destinați consumului familial în România. Vectori paraziți. 2019;12:586.

    Articol Google Academic

  19. Montoya A, Miro G, Mateo M, Ramirez C, Fuentes I. Detection of Toxoplasma gondii la pisici prin compararea testelor biologice la șoareci și a reacției în lanț a polimerazei (PCR). Vet Parasitol. 2009;160:159–62.

    Articol CAS Google Academic

  20. Homan WL, Vercammen M, De Braekeleer J, Verschueren H. Identificarea unui fragment de ADN de 200 până la 300 de ori repetitiv de 529 bp în Toxoplasma gondii și utilizarea sa pentru diagnostic și PCR cantitativ. Int J Parasitol. 2000;30:69–75.

    Articol CAS Google Academic

  21. Cavalli-Sforza LL, Edwards AW. Analiza filogenetică. Modele și proceduri de estimare. Am J Hum Genet. 1967;19:233–57.

    CAS Google Academic

  22. Halos L, Thébault A, Aubert D, Thomas M, Perret C, Geers R și colab. Un sondaj inovator care subliniază nivelul semnificativ de contaminare prin Toxoplasma gondii de carne de ovine consumata in Franta. Int J Parasitol. 2010;40:193–200.

    Articol Google Academic

  23. Verhelst D, De Craeye S, Vanrobaeys M, Czaplicki G, Dorny P, Cox E. Seroprevalence of Toxoplasma gondii la oile domestice din Belgia. Vet Parasitol. 2014;205:57–61.

    Articol CAS Google Academic

  24. Hutchinson JP, Wear AR, Lambton SL, Smith RP, Pritchard GC. Sondaj pentru determinarea seroprevalenței Toxoplasma gondii infecție la turmele de oi britanice. Vet Rec. 2011;169:582.

    Articol CAS Google Academic

  25. Jiménez-Martín D, García-Bocanegra I, Almería S, Castro-Scholten S, Dubey JP, Amaro-López MA, et al. Supravegherea epidemiologică a Toxoplasma gondii la rumegătoarele mici din sudul Spaniei. Prev Vet Med. 2020;183:105137.

    Articol Google Academic

  26. Fusco G, Rinaldi L, Guarino A, Proroga YT, Pesce A, de Giuseppina M, et al. Toxoplasma gondii la oile din regiunea Campania (Italia). Vet Parasitol. 2007;149:271–4.

    Articol Google Academic

  27. Opsteegh M, Teunis P, Mensink M, Züchner L, Titilincu A, Langelaar M, et al. Evaluarea caracteristicilor testului ELISA și estimarea Toxoplasma gondiiseroprevalența la oile olandeze folosind modele de amestec. Prev Vet Med. 2010;96:232–40.

    Articol Google Academic

  28. Deksne G, Ligere B, Šneidere A, Jokelainen P. Seroprevalența și factorii asociați cu Toxoplasma gondii infecții la oi în Letonia: rasa letonă de oi cu cap întunecat asociată cu seroprevalență mai mare. Vector Borne Zoonotic Dis. 2017;17:478–82.

    Articol Google Academic

  29. Kijlstra A, Jongert E. Controlul riscului de toxoplasmoză umană transmis prin carne. Int J Parasitol. 2008;38:1359–70.

    Articol Google Academic

  30. Romanelli PR, Freire RL, Vidotto O, Marana ERM, Ogawa L, De Paula VSO, et al. Prevalența Neospora canin și Toxoplasma gondii la oi și câini de la fermele Guarapuava, statul Parana, Brazilia. Res Vet Sci. 2007;82:202–7.

    Articol CAS Google Academic

  31. Al Hamada A, Habib I, Barnes A, Robertson I. Factori de risc asociați cu seropozitivitatea la Toxoplasma printre oi și capre din nordul Irakului. Vet Parasitol Reg Stud Rep. 2019;15:100264.

    Google Academic

  32. Dubey JP, Emond JP, Desmontis G, Anderson WR. Serodiagnosticarea toxoplasmozei induse postnatal și prenatal la ovine. Am J Vet Res. 1987;48:1239–43.

    CAS Google Academic

  33. Nishikawa Y, Claveria Florence G, Fujisaki K, Nagasawa H. Studies on serological cross-reaction of Neospora canin cu Toxoplasma gondii și Hammondia heydorni . J Vet Med Sci. 2002;64:161–4.

    Articol Google Academic

  34. Dubey JP. Toxoplasmoza animalelor și oamenilor. a 2-a ed. Boca Roton: CRC Press; 2010.

    Google Academic

  35. Hotea I, Ilie M, Imre M, Sorescu D, Dărăbus G. Determining of toxoplasmosis seroprevalence, by ELISA, in lambs in Timis County. Lucr Ştiinţifice Med Vet Iasi. 2011;54:161–4.

    Google Academic

  36. Dărăbuș G, Hotea I, Oprescu I, Morariu S, Brudiu I, Olariu RT. Toxoplasmosis seroprevalence in cats and sheep from western Romania. Revue Méd Vét. 2011;162:316–20.

    Google Academic

  37. Hotea I, Herman V, Tîrziu E, Colibar O, Brudiu I, Sîrbu C, et al. Seroprevalence and risk factors for Toxoplasma gondii infectie la ovine si caprine din Romania. Parazitologia. 2021;1:36–44.

    Articol Google Academic

  38. Slifka M, Amanna I. Imunizare pasivă. În: Plotkin SA, Orenstein WA, Offit PA, editori. Vaccinuri. a 7-a ed. Philadelphia: Elsevier; 2018. p. 84–95.

    Google Academic

  39. Klun I, Djurkovic-Djakovic O, Katic-Radivojevic S, Nikolic A. Studiu transversal asupra Toxoplasma gondii infecția la bovine, ovine și porcine în Serbia: seroprevalență și factori de risc. Vet Parasitol. 2006;135:121–31.

    Articol Google Academic

  40. Dubey JP, Sundar N, Hill D, Velmurugan GV, Bandini LA, Kwok OCH și colab. Prevalență ridicată și genotipuri atipice abundente ale Toxoplasma gondii izolat din miei destinați consumului uman în SUA. Int J Parasitol. 2008;38:999–1006.

    Articol CAS Google Academic

  41. Villena I, Durand B, Aubert D, Blaga R, Geers R, Thomas M, et al. Noua strategie pentru sondajul de Toxoplasma gondii în carne pentru consum uman. Vet Parasitol. 2012;183:203–8.

    Articol Google Academic

  42. Dumètre A, Ajzenberg D, Rozette L, Mercier A, Dardé ML. Toxoplasma gondiiinfecție la oile din Haute-Vienne, Franța: seroprevalența și genotiparea izolatelor prin analiză cu microsateliți. Vet Parasitol. 2006;142:376–9.

    Articol Google Academic

  43. Fernández-Escobar M, Calero-Bernal R, Benavides J, Regidor-Cerrillo J, Guerrero-Molina MC, Gutiérrez-Expósito D, et al. Izolarea și caracterizarea genetică a Toxoplasma gondii în turmele de oi spaniole. Vectori paraziți. 2020;13:396.

    Articol Google Academic

  44. Dubey JP. Toxoplasmoza la oi – ultimii 20 de ani. Vet Parasitol. 2009;163:1–14.

    Articol CAS Google Academic

  45. Fernández-Escobar M, Schares G, Maksimov P, Joeres M, Ortega-Mora LM, Calero-Bernal R. Toxoplasma gondii gentotiparea: o privire mai atentă în Europa. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:842595.

    Articol Google Academic

  46. Duncanson P, Terry RS, Smith JE, Hide G. Niveluri ridicate de transmitere congenitală a Toxoplasma gondiiîntr-o turmă comercială de oi. Int J Parasitol. 2001;31:1699–703.

    Articol CAS Google Academic

  47. Hurtado A, Aduriz G, Brown B, Railing J, Garcia-Perez AL. PCR imbricat cu un singur tub Toxoplasma gondiiîn ţesuturile fetale de la oi avortate în mod natural. Vet Parasitol. 2001;102:17–27.

    Articol CAS Google Academic

  48. Beverley JKA, Watson WA, Payne JM. Patologia placentei în avortul ovin prin toxoplasmoză. Vet Rec. 1971;88:124–8.

    Articol CAS Google Academic

  49. Dubey JP, Lindsay DS. Neosporoză, toxoplasmoză și sarcocistoză la rumegătoare. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2006;22:645–71.

    Articol CAS Google Academic

  50. Wastling J, Nicoll S, Buxton D. Comparația a două metode de amplificare a genelor pentru detectarea Toxoplasma gondiila oile infectate experimental. J Med Microbiol. 1993;38:360–5.

    Articol CAS Google Academic

  51. James GS, Sintchenko VG, Dickeson DJ, Gilbert GL. Comparația culturii celulare, inoculării la șoarece și PCR pentru detectarea Toxoplasma gondii: efectele condiţiilor de păstrare asupra sensibilităţii. J Clin Microbiol. 1996;1996:1572–5.

    Articol Google Academic

  52. Nayeri T, Sarvi S, Moosazadeh M, Daryani A. Prevalența globală a Toxoplasma gondiiinfecție la fetușii și rumegătoarele avortați care au avut un avort: o revizuire sistematică și meta-analiză. Vet Parasitol. 2021;290:109370.

    Articol CAS Google Academic

  53. Moreno B, Collantes-Fernández E, Vila A, Navarro A, Regidor-Cerrillo J, Ortega-Mora LM. Aparitia Neospora caninși Toxoplasma gondiiinfectii la avorturile ovine si caprine. Vet Parasitol. 2012;187:312–8.

    Articol CAS Google Academic

  54. Williams RH, Morley EK, Hughes JM, Duncanson P, Terry RS, Smith JE și colab. Niveluri ridicate de transmitere congenitală a Toxoplasma gondiiîn studii longitudinale și transversale la fermele de ovine oferă dovezi ale transmiterii pe verticală la gazdele ovine. Parazitologie. 2005;130:301–7.

    Articol CAS Google Academic

  55. Chessa G, Chisu V, Porcu R, Masala G. Molecular characterization of Toxoplasma gondiiTipul II în avortul de oi în Sardinia. Italia Parazit. 2014;21:6.

    Articol Google Academic

  56. Costache CA, Colosi HA, Blaga L, Györke A, Paştiu AI, Colosi IA, et al. First isolation and genetic characterization of a Toxoplasma gondiitulpină dintr-un caz simptomatic uman de toxoplasmoză congenitală în România. Parazit. 2013;20:11.

    Articol Google Academic

  57. Paştiu AI, Ajzenberg D, Györke A, Şuteu O, Balea A, Rosenthal BM, et al. Creșterea tradițională a caprelor poate contribui substanțial la expunerea la toxoplasmoză umană. J Parasitol. 2015;101:45–9.

    Articol Google Academic

  58. Su C, Khan A, Zhou P, Majumdar D, Ajzenberg D, Dardé ML și colab. Diversă la nivel global Toxoplasma gondiiizolatele cuprind șase clade majore care provin dintr-un număr mic de linii ancestrale distincte. Proc Natl Acad Sci USA. 2012;109:5844–9.

    Articol CAS Google Academic

  59. Schwab EK, Zhu XQ, Majumdar D, Pena HF, Gennari SM, Dubey JP și colab. Modele geografice ale Toxoplasma gondiidiversitatea genetică dezvăluită prin genotipizarea multilocus PCR-RFLP. Parazitologie. 2014;141:453–61.

    Articol Google Academic

  60. Ajzenberg D, Collinet F, Mercier A, Vignoles P, Dardé ML. Genotiparea Toxoplasma gondiiizolate cu 15 markeri microsateliți într-un singur test PCR multiplex. J Clin Microbiol. 2010;48:4641–5.

    Articol CAS Google Academic

  61. Stajner T, Vasiljevic Z, Vujic D, Markovic M, Ristic G, Micic D, et al. Tulpina atipică de Toxoplasma gondiiprovocând reactivare fatală după transplantul de celule stem hematopoietice la un pacient cu o deficiență imunologică subiacentă. J Clin Microbiol. 2013;51:2686–90.

    Articol Google Academic

  62. Fernández-Aguilar X, Ajzenberg D, Cabezón O, Martínez-López A, Darwich L, Dubey JP și colab. Toxoplasmoza fatală asociată cu un atipic Toxoplasma gondiitulpina la un wallaby lui Bennett (Macropus rufogriseus) în Spania. Vet Parasitol. 2013;196:523–7.

    Articol Google Academic

Descărcați referințe

Finanțarea

Acest studiu a fost susținut de un Grant intern al USAVMCN, nr 22333/06.10.2022.

Informatia autorului

Autori și afilieri

  1. Department of Parasitology and Parasitic Diseases, Faculty of Veterinary Medicine, University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj‐Napoca, 3‐5 Calea Mănăştur Street, 400372, Cluj‐Napoca, Cluj-Napoca, Romania

    Anamaria Ioana Paștiu, Viorica Mircean & Adriana Györke

  2. Department of Genetics and Hereditary Diseases, Faculty of Veterinary Medicine, University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj‐Napoca, 3‐5 Calea Mănăştur Street, 400372, Cluj‐Napoca, Cluj-Napoca, Romania

    Anamaria Ioana Paștiu & Dana Liana Pusta

  3. Inserm U1094, IRD U270, Univ. Limoges, CHU Limoges, EpiMaCT – Epidemiologia bolilor cronice la tropice, Institutul de Epidemiologie și Neurologie Tropicală, OmegaHealth, Limoges, Franța

    Aurélien Mercier, Nicolas Plault și Marie-Laure Dardé

  4. Centrul național de referință pentru toxoplasmoză, CHU Limoges, strada Martin Luther King nr. 2, 87042, Limoges, Franța

    Aurélien Mercier, Karine Passebosc-Faure și Marie-Laure Dardé

  5. ANSES, INRAE, Școala Națională Veterinară din Alfort, Laboratorul de Sănătate Animală, BIPAR, 94700, Maisons-Alfort, Franța

    Radu Blaga

  6. EA 7510 ESCAPE, SFR CAP-SANTE, Universitatea din Reims Champagne-Ardenne, Reims, Franța

    isabelle villena

  7. Centrul Național de Referință pentru Toxoplasmoză/Toxoplasmă Centru de Resurse Biologice, CHU Reims, Strada General Koening, Reims, Franța

    isabelle villena

  8. Department of Bromatology, Hygiene, Nutrition, Faculty of Pharmacy, “Iuliu Haţieganu” University of Medicine and Pharmacy, 6 Pasteur Street, 400349, Cluj-Napoca, Cluj-Napoca, Romania

    Anamaria Cozma-Petruț

Contribuții

AIP a colectat, a analizat mostrele și a scris manuscrisul. VM a colectat mostrele, a realizat proiectarea studiului și a scris sugestii. AM, KPF, NP și MLD genotipizate T. gondiiizolate, au construit arborele filogenetic și au revizuit manuscrisul. RB a colectat mostrele și a revizuit manuscrisul. IV a furnizat antigenul pentru MAT și a revizuit manuscrisul. DLP a făcut sugestii de scriere și corecții de limbă. ACP a revizuit critic manuscrisul și a făcut sugestii importante. AG a făcut proiectarea studiului, a făcut o analiză statistică a datelor și a făcut sugestii de scriere. Toți autorii au citit și au aprobat manuscrisul final.

autorul corespunzator

Corespondenta catre Anamaria Ioana Paștiu.

Declarații de etică

Aprobarea etică și acordul de participare

Experimentul a fost aprobat de Comitetul de Etică Animală al instituției noastre (protocol nr. 92/20.12.2017), conform Legii naționale 43/2014 și Directivei UE 2010/63/UE.

Consimțământ pentru publicare

Nu se aplică.

Interese concurente

Autorii declară că nu au interese concurente.

Informatii suplimentare

Nota editorului

Springer Nature rămâne neutră în ceea ce privește revendicările jurisdicționale din hărțile publicate și afilierile instituționale.

Despre acest articol

Citează acest articol

Paștiu, A.I., Mircean, V., Mercier, A. et al. Toxoplasma gondiiinfecție la oile din România. Vectori paraziți 16, 24 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-022-05634-8

Descărcați citarea

  • Primit:

  • Admis:

  • Publicat:

  • DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-022-05634-8

Cuvinte cheie

  • Toxoplasma gondii
  • Oaie
  • miei
  • Serologie
  • Biotest
  • PCR
  • Genotiparea microsateliților

Citește mai multe!

Distribuie această știre prietenilor tăi

Share on facebook
Share on twitter
Share on linkedin

Lasă un răspuns